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- 尾静脉很难打？其实是你忽略了这几点 - 知乎
本次文章内容丰富全面，主要分为2部分，尾静脉注射基本步骤和技术深度分析与拓展，涵盖几种小鼠品系的尾静脉注射技巧，并附有专业视频分析，非常值得大家阅读哦！
- 尾静脉注射（Intravenous Injections，IV） - 知乎
鼠尾部背侧及两侧各有一根静脉，我们一般采用左右两侧的静脉（易于固定）。 · 将小鼠用专门的 保定器 保定（注意确保小鼠呼吸通畅），并将尾部拉直，绷紧。 · 小鼠尾部用酒精棉球反复擦拭或用45-50℃的温水浸泡30秒，从而使血管充盈扩张。 · 用左手拇指和食指固定住尾部靠近末端约1 3处，食指稍上提、拇指下压使尾部弯曲。 · 右手持注射器，沿与静脉平行方向，在左手拇指上方的转折处进针。 （注意针尖斜面朝上） · 针头刺入至少3mm后，轻推针栓，如无阻力或白色皮丘出现，即可注射药物。 拔出针头前，先用干棉球按压止血。 如需反复注射，应从尾部末端开始，再逐渐向尾根方向移动。 鼠尾部背侧及两侧各有一根静脉，我们一般采用左右两侧的静脉（易于固定）。
- 如何进行小鼠尾静脉注射 - 知乎
我们需要选择针头足够细又有一定长度的注射器。 那么，到哪里去找到合适的注射器呢？ 注射器针头粗细规格表示方法为数字+Gauge（G）。 数字越大，代表针头越细。 用于小鼠尾静脉的针头规格，最好在29G以上。
- 小鼠尾静脉注射技巧 | Js Blog
尾静脉注射是小鼠实验最常见的给药方式之一，也是较难掌握的小鼠实验技能。 我在很长一段时间内，也是一直没有掌握到实验精髓。
- 一针见「耗子尾汁」：手把手教会你「小鼠尾静脉注射」 . . .
我们通过热水浸泡让静脉血管扩张、使用压脉夹使血管充盈、选择针尖更细的注射器，并用灯光使尾静脉清晰显像，然后在理解鼠尾解剖结构的基础上，找到血管位置浅又足够粗的理想穿刺点。
- 跟谷谷一起学《科研基础必修课---动物实验》：尾静脉注射 - 知乎
大鼠尾静脉注射，可以说是每一位医学生、科研人员所必须熟练掌握的技术方法，也是 科研动物实验入门的必备技能。 那大鼠尾静脉注射又该如何操作呢？ 上周末，谷老让司言带着科研小白--若谷，去动物房练习大鼠的尾静脉注射和采血。 司言挑了一只 体重380g 的大鼠，选择 麻醉剂6%水合氯醛，按 350mg kg 的剂量， 腹腔注射约2 3ml。 （如果不会计算，点这里） 若谷作为科研小白，由于实验室没有大鼠专用固定器，要在不麻醉状态下练习尾静脉注射实有挑战性，所以司言就将大鼠麻醉。 几分钟后，大鼠就已经“鼠事不清”了。 注意： 麻药会对动物模型产生影响，哪怕是有那么一点点的可能,所以有些时候必须在非麻醉状态下经尾静脉注射药物。
- 折磨操作者和小鼠的尾静脉注射，有什么快速入门技巧？
相比于灌胃、皮下，腹腔等给药方法，尾静脉注射可能是相对有难度的一种给药方式。 除了多加练习找到属于自己的感觉外，我个人也总结了一些小经验来最大限度的克服「针头刺进去之后不能准确找到血管的位置」这一最大难点，仅供大家参考。
- 动物实验：小鼠尾静脉注射操作方法技巧 - GemPharmatech
尾静脉注射 (Intravenous Injections，IV)，一种用注射器将少量或单一种类药品注射到静脉，使药物直接进入血液循环的一种方式。
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